Robot stereotaktyczny – StereoDrive

Robot stereotaktyczny – StereoDrive

Producent: 

W pełni zrobotyzowane narzędzie do stereotaksji szczurów, myszy i większych zwierząt. Posiada oprogramowanie z cyfrowym atlasem mózgu, automatycznie skalowanym na podstawie położenia punktów bregma i lambda. Komputerowa korekcja pochylenia głowy i regulacja kątów nachylenia. Precyzja 1 mikrona.

Dodaj do zapytania
  • Opis
  • Do pobrania
  • Publikacje

Robot stereotaktyczny – StereoDrive

Neurostar jest wynalazcą i jedynym na świecie producentem robotów stereotaktycznych StereoDrive. Wykorzystując ramę StereoDrive możesz przeprowadzać eksperyment bez koniecznoście ręcznego manipulowania ustawieniami.  StereoDrive jest wyposażony w silniczki sterowane komputerowo, które pozycjonują sondę w punkcie o parametrach ustalonych przez ekpserymentatora. Integracja systemu z atlasem mózgu i intuicyjna kontrola ruchów zdecydowanie wpływa na olbrzymią dokładność, wysoką przepustowość badań elektrofizjologicznych i iniekcji stereotaktycznych.

Cechy

Zalety

  • komputerowa kontrola
  • integracja z atlasem mózgu
  • automatyczne skalowanie atlasu w odniesieniu do punktów bregma i lambda
  • korekcja pochylenia głowy
  • ustawienie punktu bregma
  • ustawienie kątów
  • uniknięcie błędów ludzkich dzięki pełnej automatyzacji zabiegów
  • ogromna precyzja
  • oszczędność czasu ze względu na wykonywanie precyzyjnych zabiegów
  • wysoka przepustowość badań
  • planowanie eksperymentu
  • definiowanie i przechowywanie celów eksperymentu w oprogramowaniu
  • intuicyjna nawigacja w oprogramowaniu

Eliminacja typowych wad klasycznej stereotaksji

  • Jedną z przewag StereoDrive jest to, że nie musisz już koncentrować się na konwersji współrzędnych ramy na współrzędne atlasu. Z StereoDrive możesz skupić się na atlasie, zostawiając oprogramowaniu dokonanie wszystkich wymaganych obliczeń.
  • StereoDrive osiąga bezprecedensową precyzję pozycjonowania, niemożliwą do osiągnięcia w trakcie ustawień manualnych lub za pomocą cyfrowych odczytów.
  • Pozycjonowanie sondy w StereoDrive jest kontrolowane komputerowo, co eliminuje wibracje przenoszone przez dłoń podczas czynności manualnych.

Używasz już stereotaksję z Kopf lub Stoelting?

Rozbuduj ją do robota stereotaktycznego StereoDrive! Neurostar oferuje adaptację i instalację robotów stereotaktycznych do ram Kopf i Stoelting, co obniży koszty unowocześnienia systemu.

Obejrzyj wszystkie zalety i funkcjonlości StereoDrive

 

2013

Prefrontal Activity Links Nonoverlapping Events in Memory.

Gilmartin, M. R., Miyawaki, H., Helmstetter, F. J., & Diba, K. (2013)
The Journal of Neuroscience, 33(26), 10910-10914.


Effect of BDNF and adipose derived stem cells transplantation on cognitive deficit in Alzheimer model of rats.

Babaei, P., Tehrani, B. S., & Alizadeh, A. (2013)
Journal of Behavioral and Brain Science, 3, 156-161.


Subcortical effects of transcranial direct current stimulation (tDCS) in the rat.

Bolzoni, F., Bączyk, M., & Jankowska, E. (2013)
J. Physiol. 2013 Aug 15;591(Pt 16):4027-42. doi: 10.1113/jphysiol.2013.257063. Epub 2013 Jun 17.


Synaptic Muscarinic Response Types in Hippocampal CA1 Interneurons Depend on Different Levels of Presynaptic Activity and Different Muscarinic Receptor Subtypes.

Bell, L. A., Bell, K. A., & McQuiston, A. R. (2013)
Neuropharmacology. 2013 Oct;73:160-73. doi: 10.1016/j.neuropharm.2013.05.026. Epub 2013 Jun 5.


Enduring Effects of Early Life Stress on Firing Patterns of Hippocampal and Thalamocortical Neurons in Rats: Implications for Limbic Epilepsy.

Ali, I., O’Brien, P., Kumar, G., Zheng, T., Jones, N. C., Pinault, D., O’Brien, T. J. (2013). 
PLOS ONE, 8(6), e66962.


The toxicity of antiprion antibodies is mediated by the flexible tail of the prion protein.

Sonati, T., Reimann, R. R., Falsig, J., Baral, P. K., O’Connor, T., Hornemann, S., Aguzzi, A. (2013)
Nature, 501(7465), 102-106.


The calcium-binding protein parvalbumin modulates the firing 1 properties of the reticular thalamic nucleus bursting neurons.

Albéri, L., Lintas, A., Kretz, R., Schwaller, B., & Villa, A. E. (2013)
Journal of Neurophysiology, 109(11), 2827-2841.

 

2012

Myelin debris regulates inflammatory responses in an experimental demyelination animal model and multiple sclerosis lesions.

Clarner, T., Diederichs, F., Berger, K., Denecke, B., Gan, L., Van der Valk, P., Kipp, M. (2012).
Glia, 60(10), 1468-1480.


Responsiveness to nicotine of neurons of the caudal nucleus of the solitary tract correlates with the neuronal projection target.

Feng, L., Sametsky, E. A., Gusev, A. G., & Uteshev, V. V. (2012)
Journal of Neurophysiology, 108(7), 1884-1894.

 

2011

Central inflammation and sickness-like behavior induced by the food contaminant deoxynivalenol: A PGE2-independent mechanism.

Girardet, C., Bonnet, M. S., Jdir, R., Sadoud, M., Thirion, S., Tardivel, C., Troadec, J. D. (2011)
Toxicological Sciences, 124(1), 179-191.

 

2010

A26 Transgenic miniature pig as an animal model for Huntington’s disease.

Baxa, M., Juhas, S., Pavlok, A., Vodicka, P., Juhasova, J., Hruška-Plocháň, M., Motlik, J. (2010).
Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A8-A9


A28 Accumulation and aggregation of human mutant huntingtin and neuron atrophy in BAC-HD transgenic rat.

Yu, L., Metzger, S., Clemens, L. E., Ehrismann, J., Ott, T., Gu, X., Nguyen, H. P. (2010).
Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.


Frontostriatal pathology in the (C57BL/6J) YAC128 mouse uncovered by the operant delayed alternation task.

Brooks, S., Jones, L., & Dunnett, S. B. (2010). A29
Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A10.


A27 Expression of the human mutant huntingtin in minipig striatum induced formation of EM48+ inclusions in the neuronal nuclei, cytoplasm and processes.

Hruška-Plocháň, M., Juhas, S., Juhasova, J., Galik, J., Miyanohara, A., Marsala, M., Motlik, J. (2010).
Journal of Neurology, Neurosurgery & Psychiatry, 81(Suppl 1), A9-A9.